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感受态细胞制备原理及方法(CaCl2法)

  一.   服务介绍                      


       目前,感受态细胞的制备常用冰预冷的CaCl2处理细菌的方法制备,即用低渗CaCl2溶液在低温(0℃)时处理快速生长的细菌,从而获得感受态细菌。此时细菌膨胀成球形,外源DNA分子在此条件下易形成抗DNA酶的羟基-钙磷酸复合物粘附在细菌表面,通过热激作用促进细胞对DNA的吸收。转化效率可达106-107转化子/微克DNA。


  二.实验方法                                          


       本方法的关键是选用的细菌必须处于对数生长期,实验操作必须在低温下进行。


操作:


       1、取-70℃冰冻菌种,用划线法接种细菌于培养皿,做好标记,于37℃培养过夜。


       2、第二天,从平板上挑取单个菌落,接种至含有3ml LB培养液的试管中,37℃振荡培养过夜。次日取菌液1ml接种至含有100ml LB培养基的500ml烧瓶中,370C剧烈震荡培养约2~3小时(200~300r/min)


       3、当菌落600nm OD值达到0.3-0.4时,将烧瓶取出放置冰上10~15分钟。在无菌条件下把菌液倒入50ml离心管中。4℃,4000g离心10分钟。


       4、弃上清,将管倒置于干滤纸上1min,吸干残留的培养液。加10ml 0.1M的CaCl2到离心管中,振荡混匀,悬浮菌体,冰浴30分钟。


       5、4℃,4000g离心10分钟,弃上清,将管倒置于干滤纸上1min,吸干残留的培养液.加4ml冰预冷的0.1M的CaCl2,重悬浮菌体。每管0.2ml分装,至4℃保存备用,24-48小时内使用效果较好。如果暂时不用,可再保存于-70℃的低温冰箱中。


感受态细胞的制备


       1.  (7-10天以内的平板)取保存的菌接种于LB固体培养基, 37°C培养过夜(不超过16h)


       2.  挑取单菌落至5mlLB液体培养基,37°C,200rpm培养过夜


       3.  按1:100(可以1:200或更多)取1ml培养菌液转入100ml LB液体培养基中,37C,250rpm培养至OD600=0.3至0.4,立刻置于冰上,10 分钟(严格冰上操作,轻柔,避免较大的振荡)。


       4.  4000rpm离心5min(JA-20,beckman),去上清,加入2.5ml 0.1M MgSO4(或MgCl2) 溶液,悬浮沉淀,冰浴15min


       5.  4000rpm离心5min,去上清,加入2.5ml 0.1M CaCl2及15%甘油(建议细菌浓度更高),悬浮沉淀。


       6.  以每管200ul分装,-70C保存备用(可以液氮速冻)


       7.  以标准质粒确定感受态细胞的转化率


快速质粒DNA转化方法
 

       取质粒5ul(2ng/ul)与50ul新鲜配制的1×SSC:0.1mol/l CaCl2(体积比1:2;1×SSC含0.15mol/L NaCl和15mmol/L 柠檬酸钠,pH7.0)于冰上放置90s,加入100ul DH5α感受体,冰上放置5min;42°C热休克2min后,迅速放回冰上1min,取所有转化混合物均匀铺于LB平板(含100ug/ml的Amp,可以在37°C预热),37°C12-16小时.

       感受态细胞制备原理

       (本文来源丁香通)


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