真核生物的一切有核细胞（包括培养细胞）都能用来制备基因组 DNA。真核生物的DNA是以染色体的形式存在于细胞核内，因此，制备DNA的原则是既要将DNA与蛋白质、脂类和糖类等分离，又要保持DNA分子的完整。

       提取DNA的一般过程是将分散好的组织细胞在含SDS（十二烷基硫酸钠）和蛋白酶K的溶液中消化分解蛋白质，再用酚和氯仿/异戊醇抽提分离蛋白质，得到的DNA溶液经乙醇沉淀使DNA从溶液中析出。

蛋白酶K的重要特性是能在SDS和EDTA（乙二胺四乙酸二钠）存在下保持很高的活性。

       在匀浆后提取DNA的反应体系中，SDS可破坏细胞膜、核膜，并使组织蛋白与DNA分离，EDTA则抑制细胞中Dnase的 活性；而蛋白酶K可将 蛋白质降解成小肽或氨基酸，使DNA分子完整地分离出来。

  二.实验仪器以及试剂                    

       1. 仪器：

       恒温水浴锅、台式离心机、紫外分光光度计（GeneQuant）、移液器、玻璃匀浆器、离心管（灭菌）、吸头（灭菌）

         2. 试剂：

      （1）细胞裂解缓冲液：

       Tris (pH8.0) 100 mmol/L

       EDTA (pH 8.0) 500 mmol/L

       NaCL 20 mmol/L

       SDS 10%

       胰RNA酶 20ug/ml

    （2） 蛋白酶K： 称取20mg蛋白酶k溶于1ml灭菌的双蒸水中，?C20℃备用。

    （3）TE缓冲液（pH 8.0）：高压灭菌，室温贮存。

    （4）酚?氯仿?异戊醇（25:24:1）、

    （5）异丙醇、冷无水乙醇、70%乙醇、灭菌水。

  三.实验方法以及步骤                    

        1. 取新鲜或冰冻动物组织块0.1g（0.5cm3），尽量剪碎。置于玻璃匀浆器中，加入1ml的细胞裂解缓冲液匀浆至不见组织块，转入1.5ml 离心管中，加入蛋白酶K （500ug/ml）20μl，混匀。

       在65℃恒温水浴锅中水浴30min，也可转入37℃水浴12～24h，间歇振荡离心管数次。于台式离心机以12000 rpm离心5min，取上清液入另一离心管中。

       2.加2倍体积异丙醇，倒转混匀后，可以看见丝状物，用100ul 吸头挑出，凉干，用200ul TE 重新溶解。（可进行PCR反应等，需要进一步纯化的按下列步骤进行）

       3.加等量的酚?氯仿?异戊醇振荡混匀，离心12000 rpm，5min。 

       4.取上层溶液至另一管，加入等体积的氯仿?异戊醇，振荡混匀，离心12000 rpm，5min。 

       5. 取上层溶液至另一管，加入1/2体积的7.5mol/L乙酸氨加入2倍体积的无水乙醇，混匀后室温沉淀2min ，离心12000 rpm ,10min。

       6.小心倒掉上清液，将离心管倒置于吸水纸上，将附于管壁的残余液滴除掉。

       7.用1ml 70%乙醇洗涤沉淀物1次，离心12000 rpm ， 5min。

       8.小心倒掉上清液，将离心管倒置于吸水纸上，将附于管壁的残余液滴除掉，室温干燥。

       9.加200ul TE重新溶解沉淀物，然后置于4℃或?C20℃保存备用。

       10.吸取适量样品于GeneQuant上检测浓度和纯度。

       常见问题

       1.选择的实验材料要新鲜，处理时间不易过长。

       2.在加入细胞裂解缓冲液前，细胞必须均匀分散，以减少DNA团块形成。

       3. 提取的DNA不易溶解：不纯，含杂质较多；加溶解液太少使浓度过大。沉淀物太干燥，也将使溶解变得很困难。

       4. 电泳检测时DNA成涂布状：操作不慎；污染核酸酶等。

       5.分光光度分析DNA的A280/A260小于1.8；不纯，含有蛋白质等杂质。在这种情况下，应加入SDS至终浓度为0.5%，并重复步骤2～8。

       6.酚/氯仿/异戊醇抽提后，其上清液太黏不易吸取：含高浓度的DNA，可加大抽提前缓冲液的量或减少所取组织的量。 

       基因组DNA提取方法2008-10-23 18:43制备基因组DNA是进行基因结构和功能研究的重要步骤，通常要求得到的片段的长度不小于100-200kb。

       在DNA提取过程中应尽量避免使DNA断裂和降解的各种因素，以保证DNA的完整性，为后续的实验打下基础。主要是CTAB方法，其他的方法还有1物理方式:玻璃珠法超声波法研磨法冻融法。2化学方式：异硫氰酸胍法碱裂解法3生物方式:酶法。根据核酸分离纯化方式的不同有:硅质材料、阴离子交换树脂等

       试验步骤：

       1、贴壁细胞用胰酶消化，离心收集。

       2、细胞重悬于冰冷的PBS漂洗一次，离心收集。试验步骤2再重新作一边。

       3、加入5mlDNA提取缓冲液，(10mmol/LTris-cl0.1mol/LEDTAo.5%SDS)混匀。

       4、加入25ul蛋白酶K使终浓度达到100ug/ml混匀，50℃水浴3h

       5、用等体积的酚抽提一次，2500rpm离心收集水相，用等体积的（酚，氯仿，异戊醇）混合物抽提一次，2500r/min离心收集水相

       6、用等体积的氯仿，异戊醇抽提一次。加入等体积的5mol/L的LiCL混匀，冰浴，10min.。

       7、2500rpm离心10min.转上清于一离心管中。加入等体积的异丙醇。室温10min。

2500rpm离心10min。弃上清。

       8、加入0.1倍体积3mol/L乙酸钠(PH5.2)与2倍体积-20℃预冷无水乙醇。-20℃20min。

       9、12000r/min室温离心5min。弃上清。将DNA溶于适量TE中。

外周血DNA提取技术

       分离外周血白细胞提取方法：

       试验步骤：

       1、取人肘静脉血5ml，EDTA抗凝，2500rpm离心10min。

       2、小心吸取上层血浆，分装到3个0.5ml离心管中。

       3、在血细胞中加入3倍体积的溶血液，摇匀，冰浴15min。

       4、2500rpm离心10min，弃上清。

       5、加入10ml溶血液，摇匀，冰浴15min。

       6、3000rpm离心10min，弃上清。

       7、倒置离心管，去掉残液。

       8、得白细胞，－80?C冻存。

       试验要求：

       血至分离白细胞之间隔时间在室温下放置不超过2h，4℃放置不超过5h，以防白细胞自溶。

       （本文转载百度学术）